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人间充质干细胞成骨诱导分化培养基

作者:深圳市伟通生物公司 2014-05-22T00:00 (访问量:8671)

 人间充质干细胞成骨诱导分化培养基

货号:CP1202

产品描述:伟通生物的成骨诱导分化培养基适用于干细胞向成骨细胞诱导分化,本品包含成骨分化所有成分,能有效提高成骨细胞诱导分化效率。另外附送两种成骨细胞染色液,并有详细操作步骤。产品严格无菌,无病毒和支原体,性能稳定。

产品组份

名称

规格

保质期

储存条件

运输

基础培养基

87ml

12个月

2-8℃避光保存

冰袋运输

干细胞成骨诱导分化液

1ml

12个月

2-8℃避光保存

胎牛血清

10ml

60个月

-20℃避光保存

干细胞生长添加剂

1ml

12个月

-20℃避光保存

青霉素/链霉素溶液

1ml

12个月

-20℃避光保存

von Kossa染色液

1ml

12个月

2-8℃避光保存

茜素红染色液

1ml

12个月

2-8℃避光保存

作为完全的,即用型的培养基,不需要额外的添加物,各组分不单独销售。

产品用于

仅供研究使用。不适用于人或动物体外诊断与治疗。

使用注意事项:

1.    在配制完全培养基前,请把胎牛血清、干细胞生长添加剂、青霉素-链霉素、干细胞成骨诱导分化液等放到2-8℃冰箱过夜解冻或37℃水浴中直到完全溶解。

2.    在使用完全培养基前,需要把培养基放到37℃恒温水浴中预热20min

3.    请把配制好的完全培养基放在4℃冰箱避光保存,并尽量在一个月内使用完。

 

成骨细胞诱导的准备

P0-P4代干细胞,针对P0-P4MSC细胞进行成骨诱导分化可以获得更好的诱导效果。

培养箱:5CO 237℃,饱和湿度条件下在空气中

容器:24孔板、96孔板或者6孔板

培养条件:避光贴壁培养;确保适当的气体交换

良好的细胞状态、合适的细胞融合度有助于成骨细胞的形成。

 

成骨诱导操作步骤:

1.    MSCs按照5×103/cm2接种于24孔培养板中,在干细胞扩增培养基37℃,5% CO2的无菌培养箱中培养24h~48h,观察MSC的生长状态,直至细胞融合度达到80%,细胞存活率90%以上。吸去培养基,

2.    更换为成骨诱导培养基,每3天更换一次培养基,连续诱导至3~4周。

3.    在经过特定时期的培养后,成骨培养后的细胞至4周时(26-28天)可以被von Kossa染色液染色骨结节鉴定晚期成骨或茜素红S染色(诱导超过21天后,见下面的方法)处理分析,以及可以进行基因表达分析和蛋白检测等。

 

Von Kossas矿化结节染色法

原理是将矿化基质中的磷酸盐()、碳酸盐()转变为磷酸银、碳酸银,然后用日光、紫外线或强还原剂使其还原为黑色的金属银。本试验染色过程中未作细胞衬染。 

1.    培养皿用PBS冲洗2次,4%多聚甲醛固定5分钟,双蒸水冲洗3次。 

2.    培养皿中加入5%**银溶液1ml,在黑暗中孵育10分钟,将培养板开盖在紫外灯下照射1小时。 

3.    倒出残留的**银溶液,蒸馏水冲洗3遍。 

4.    培养皿中加入5%硫代硫酸钠溶液1ml,中和残留的**银溶液,吸出残液。 

5.    室温下晾干,封固。 

 

茜素红S染色分析

1. 经过21天或者更长时间的成骨分化培养后,去除培养基,用PBS清洗一次,然后再用4%的甲醛溶液固定细胞30 min

2. PBS清洗2次,再用2%pH4.2的茜素红S染色2~3min后,用PBS清洗3次,去处残留的染色液,

3. 在光学显微镜下进行显色观察分析。

 

 

质量控制

每个批号的诱导分化培养基均将干细胞有效诱导为成骨细胞。产品的整个生产流程均在GMP车间完成,严格按照GMP标准操作。每批产品均有严格的细菌、真菌、内毒素、pH等指标检测。确保产品质量合格。

检测指标

检测结果

参照说明

细菌

阴性

阴性

真菌

阴性

阴性

支原体

阴性

阴性

细胞分化效果

符合标准

参照检测标准 

 

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